全文总字数:9169字
1. 研究目的与意义、国内外研究现状(文献综述)
一、课题的意义复叶在不同的植物类群中经历了多次独立的进化,形成了各异的形态和不同的发育模式。
class i knotted-like homeobox (knoxi)基因和植物复叶发育密切相关,但在豆科inverted repeat-lacking clade (irlc)分支的植物中(如豌豆、蒺藜苜蓿),leafy (lfy)基因取代了knoxi基因的功能来调控复叶发育。
传统观点认为在non-irlc豆科植物中,其复叶发育受knoxi基因的控制,而lfy基因的作用甚微。
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2. 研究的基本内容和问题
1) 研究目标:un2基因在绿豆复叶发育中的功能及基因定位。
2) 研究内容:本课题以绿豆叶片为材料,在绿豆不同生长期对其叶片发育情况进行观察记录。
同时在不同生长期进行去顶处理,研究去顶和不去顶情况下对绿豆叶片发育的影响。
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3. 研究的方法与方案
一、 引物设计例:
| Sequence (5-3) | Template str | Length | Start | Stop | Tm | GC | Self complementarity |
Fward primer | GTCACTCCCAACAACACACTT | Plus | 21 | 102 | 122 | 58.63 | 47.62 | 3.00 |
Reverse primer | CAAGTGCATCATTTTTAGGAACA | Minus | 23 | 282 | 260 | 56.00 | 34.78 | 4.00 |
二、提取DNA1.取植物新鲜组织约100 mg,加入液氮充分碾磨。2.将研磨好的粉末迅速转移到预先装有700 μL 65 ℃预热缓冲液GP1的离心管中(实验前在预热的GP1中加入巯基乙醇,使其终浓度为0.1 ),迅速颠倒混匀后,将离心管放在65℃水浴20 min,水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。3.加入700μL氯仿,充分混匀,12,000 rpm离心5 min。注若提取富含多酚或淀粉的植物组织,可在第3步前,用酚:氯仿们/11进行等体积抽提。4.小心地将上一步所得上层水相转入一个新的离心管中,加入700 μL缓冲液GP2,充分混匀。5.将混匀的液体转入吸附柱CB3中,12,000 rpm离心30sec,弃掉废液,(吸附柱容积为700 μL左右,可分次加入离心。)6.向吸附柱CB3中加入500 μL缓冲液GD,12000 rpm离心30sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。7.向吸附柱CB3中加入600μL漂洗液PW,12,000 rpm离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。8.重复操作步骤7。9.将吸附柱CB3放回收集管中,12,000 rpm离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。注意这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。10.将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加100 μL洗脱缓冲液TE,室温放置2-5 min,12,000 rpm离心2 min,将溶液收集到离心管中。三、DNA聚合酶式反应(PCR)反应体系为:试剂 用量Template10xTaq酶 buffer 1 μL2 μL2.5 mM dNTP 2 μL10 uM Primer 0.4 μL5 U/μL TaqDNA ploymerase 0.2 μLddH2O 加至20 μL 反应条件:1、94 ℃变性3 min;2、94 ℃变性30sec;3、退火30 sec;4、72 ℃延伸,延伸5 min;取3-5 μL扩增产物用琼脂糖电泳进行检测鉴定。。四、分子标记选择与开发通过序列对比分析挖掘InDel标记,,利用分子标记设计引物进行PCR扩增,再利用聚丙烯酰胺凝胶电泳检测其多态性是否可用。五、聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)1.实验开始前先将玻璃板洗干净,晾干后装进皮套备用。2按每块胶10m2xTBE溶液的量配制1Agrose封底胶。称取适量的 Agrose配制1Agrose封底胶,倾斜倒入装好的玻璃板内,注满底部即可。3.约20 min后,封底胶凝固,配制聚丙烯酰胺凝胶即变性胶按每块胶25 mL 聚丙烯酰胺母液/20 μL TEMED/0.4 mL 10 过硫酸铵(AP)溶液的比例配胶,迅速混匀后立刻注胶,并插上小孔梳子,静置待凝固后使用。4.水平放置约2 h,待变性胶完全凝固后,拔岀梳子,将电泳板装入电泳槽,四角旋紧,加入电泳液(注意检査电泳槽是否漏水,如果漏水严重需要重新安装)。5.在确保电泳槽的不漏水后,用枪头反复吹打清洁泳道,以保证样品能沉到泳道底部。然后用注射式加样器按顺序点样。6.样品加入完成,启动电泳仪,将电压控制在200 V左右。电泳约2个小时后银染。六、银染1.关闭电源,拔掉接线,将缓冲液倒入缓冲液收集箱。拆卸电泳槽,取岀 PAGE胶,放入盛有单蒸水的盆中漂洗2 min左右。2.按0.1 称AgNO3溶于水中,放入PAGE胶染色10 min。然后取出,再次放入单蒸水中漂洗2 min。3.将PAGE胶浸泡在NaOH显色液中,显色1O min以上(根据具体情况,背景颜色不能过深,否则影响观察)。4待条带清晰显现后,将胶移入清水中固定(最好是用白色的瓷盘,便于观察)。观察拍照并记录结果。丙烯酰胺母液配制(1)10×TBE的配制Tris碱 108 g硼酸(H3BO3) 55 gEDTA一Na2H2O 7.44 gddH2O up to 1000 mL(2)4L丙烯酰胺母液配制丙烯酰胺 250 gN,N′一亚甲双丙烯酰胺 13.0 g尿素 500 g10×TBE 400 mLddH2O up to 4000 mL10 过硫酸胺溶液配制过硫酸胺 10.0 gddH20 up to 100 mL0.1ANO3溶液的配制通常以4块PAG胶为基准,称取0.4 g的AgNO3,ddH2O 400 mL,当胶块数多于4块时,以每块胶0.1 g AgNO3/100 mL ddH2O的比例增加(AgNO3溶液有毒,需要现配现用)。NaOH显色溶液以4块胶为基准进行配制总体积400 mL的显色液,当胶数大于4块时,以4块胶的梯度增加。NaOH 6 g四硼酸钠 0.076 g甲醛 1.6ddH20 up to 400 mL10 x loadin bufter的配制溴酚蓝 1.7 g二甲苯氰FF 1.7 g蔗糖 266.6 gddH2O up to 400 mL
4. 研究创新点
绿豆作为豆科植物复叶发育的新的模式系统,其分子机制尚不清楚。
un2是实验室新鉴定的绿豆复叶发育突变体,与绿豆基因突变体un1存在遗传相互作用。
定位un2基因,解析其调控复叶的遗传网路,有助于揭示绿豆复叶发育的分子机理。
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5. 研究计划与进展
1) 研究周期:2019年2月——2019年5月2) 研究阶段:A. 2019年2月——2019年4月:设计引物、提取绿豆叶片DNA、DNA聚合酶式反应、聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)B. 2019年4月——2019年5月:对不同时期绿豆叶片拍照记录、整理数据并总结3) 预期进展:预计5月初完成全部实验,定位调控复叶发育的基因UN2。
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