1. 研究目的与意义
小麦(triticum aestivumlinn.)是我国仅次于水稻的第二粮食作物,也是我国北方最喜爱的主食。我国有2种小麦,春小麦与冬小麦,种植以冬小麦为主。冬小麦一般在9月中下旬至10月上旬播种,其适合生长温度为15~20℃。
小麦的生长过程中会遇到高低温、盐碱、强光、少雨等诸多不利因素的胁迫。其中,高温作为影响农作物生长的胁迫因子之一,常常引起植物的结构与功能发生重大的破坏,从而使植物生长受到炼制,进而影响到产量。
近年来, 随着温室效应的加剧, 全球气温的上升直接威胁着二十一世纪农业生产方向。植物生产面临着高温胁迫( heat stress) 的严峻挑战。因此研究高温对植物生理特性的影响已经成为一个全球性的课题。我国作为小麦的主产区之一,高温胁迫也是影响我国小麦产量的重要因素,所以研究高温胁迫对小麦幼苗生理生化的影响,有助于采取相应的措施来减轻高温对小麦的伤害。
2. 研究内容和预期目标
高温是限制植物生长、地理分布、作物产量的一种主要环境因子,无论是耐高温植物还是不耐高温植物均有可能遭受高温的伤害;研究高温对植物生理特性的影响已经成为一个全球性的课题。为此,可采用模拟高温实验法,选择小麦幼苗期作为实验时段,研究高温(35℃)对小麦幼苗逆境指标的影响。
近几年来生理学研究发现,外施Ca2 可以增强植物对许多非生物逆境的适应性,减轻逆境对植物所造成的伤害。所以,可采用不同浓度的Ca2 对高温胁迫小麦幼苗进行处理,通过对不同逆境指标(叶绿素总量、SOD酶活性、丙二醛含量、可溶性糖含量、脯氨酸含量等)的测定,分析Ca2 在小麦幼苗高温逆境胁迫过程中的作用,为探讨提高小麦的抗逆性奠定基础。
本实验力求客观反映Ca2 、高温胁迫对小麦幼苗处理后可能存在的剂量效应和时间效应。
3. 研究的方法与步骤
1.小麦幼苗的培养
将小麦种子用蒸馏水洗2~3次,挑除杂质,漂去漂浮的种子。淘洗后,将种子放置于底部有滤纸的培养皿上,每个培养皿都一定量的种子,然后加入适量的蒸馏水,盖好培养皿。再将其放入25℃的恒温箱中催芽。等芽长大2cm左右时,可以于光照培养箱中加完全培养液培养。当芽长大约10cm左右时可以转移到培养瓶中培养。待小麦幼苗长出2片真叶时,可以进行胁迫实验。
2.实验处理
(1)温度的选择
前期通过预实验,拟定35°C与40°C为胁迫温度,通过实验观察与叶绿素等相关实验指标的测量,最终决定选用哪个温度为正式实验温度。
(2) 实验处理
将小麦幼苗进行分组,高温胁迫组:利用(0mmol·L-1CaCl2)完全培养液、5mmol·L-1CaCl2完全培养液、10 mmol·L-1CaCl2完全培养液、15 mmol·L-1CaCl2完全培养液,置于35℃的恒温培养箱中培养;另取适量幼苗作为常温对照组,置于25℃的恒温培养箱中培养。整个实验过程中必须保证小麦幼苗培养液充足。然后在实验处理的第1d,3d,5d,7d,9d时分别测定两组幼苗的叶绿素含量,MDA含量,可溶性糖,Pro含量以及SOD酶的活性。
3 叶绿素含量的测定
实验步骤:直接使用叶绿素计测量不同处理的各个实验组的叶绿素含量。所有叶片统一取距离叶尖5-10cm的部分进行测量,每组测量10次,取平均值。
4 MDA的测定——硫代巴比妥酸法
实验步骤:称取0.5g小麦幼苗叶片,加入1mL10%三氯乙酸(TCA)、石英砂研磨;进一步加入4mL10%TCA充分研磨。将匀浆液转入离心管,于4000r·min-1离心10min,上清夜即MDA提取液。取2mLMDA提取液,再加2mL硫代巴比妥酸(TBA)于沸水浴中反应15min,迅速冷却,离心。取上清液于450nm处和532nm处测定OD值,再根据公式计算可溶性糖和MDA含量。对照管以2mL水代替提取液。
结果计算:CMDA=6.45A532-0.56A450(μmol·L-1)
C糖=A450/85.4=11.71A450(mmol·L-1)
公式中:A450—450nm波长下测得的吸光度值;
A532—532nm波长下测得的吸光度值
CMDA、C糖分别是反应混合液中MDA、可溶性糖的浓度。
5 脯氨酸的测定
实验步骤:(1) 脯氨酸标准曲线的制作:取11支10mL容量瓶,编号,按下表配制每管含量为0~10μg的脯氨酸标准液。
试剂 | 0 | 1 | 2 | … | 9 | 10 |
100μg·mL-1脯氨酸标准液(mL) 蒸馏水定容至(mL) 每管脯氨酸浓度(μg·mL-1) | 0 10 0 | 0.1 10 1 | 0.2 10 2 | … … … | 0.9 10 9 | 1.0 10 10 |
取11只带塞试管,分别吸取2mL系列标准浓度的脯氨酸溶液,加2mL3%的磺基水杨酸,2mL冰醋酸和4mL2.5%酸性茚三酮溶液,每管在沸水浴中显色1h,取出冷却,各试管再加入4mL甲苯,振荡30s,静置片刻,使色素全部转至甲苯溶液。轻轻吸取各管上层脯氨酸甲苯溶液至比色杯中,在520mm波长处测定吸光度值。以1~11号管脯氨酸含量为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线。计算2mL测定液中脯氨的含量(μg·mL-1)。
(2) 样品的测定:称取不同处理的植物叶片各0.5g,加入5mL3%的磺基水杨酸溶液,加入石英砂充分研磨,匀浆移至离心管中,在沸水浴中提取10min(提取过程中要经常摇动),冷却后在3000r/min下离心10min。吸取2mL提取液于带玻塞试管中,分别加入2mL的蒸馏水,2mL冰醋酸及4mL2.5﹪酸性茚三酮试剂,与上述制作标准曲线一样进行显色,萃取和鼻塞,最后从标准曲线查得脯氨酸的含量。
6 可溶性糖的测定——蒽酮比色法
实验步骤:(1)标准曲线的制作:将分析纯蔗糖在80°C下烘干至恒重,精确称取1.00g。加入少量水,转入100mL容量瓶中,加入0.5mL的浓硫酸,用蒸馏水定容。精确吸取上述蔗糖标准液1mL加入100mL容量瓶中,加水至刻度。取11只刻度试管,按下表加入溶液和水。
试剂 | 管号 | |||||
0 | 1、2 | 3、4 | 5、6 | 7、8 | 9、10 | |
100μg·L-1蔗糖液(mL) 水 (mL) 每管蔗糖量(μg) | 0 2.0 0 | 0.2 1.8 20 | 0.4 1.6 40 | 0.6 1.4 60 | 0.8 12 80 | 1.0 1.0 100 |
然后按顺序向试管加入0.5mL蒽酮乙酸乙酯和5mL浓硫酸,充分振荡,立即将试管放入沸水中,逐个保温1min,取出后自然冷却到室温,以空白做参比,在630nm波长下测其吸光度,以吸光度为纵坐标,以糖含量为横坐标,绘制标准曲线,并求出线性方程。
(2)可溶性糖的提取:取新鲜叶片,擦净表面,称取0.3g叶片,剪碎,放入20mL的试管中,加入10mL的水,加塞,以沸水中提取30min,过滤;将剩余的叶片再次加入10mL的水沸水30min,过滤,提取液过滤如25mL的容量瓶中,仿佛漂洗试管及残渣,定容至刻度。
(3)显色测定:吸取提取液0.5mL于20mL刻度试管中,加入1.5mL的蒸馏水,以下与标准曲线测定相同,测定样品的吸光度,计算可溶性糖的含量。
7 SOD的测定——邻苯三酚自氧化法
实验步骤:(1)提取液的制备:取小麦幼苗的叶片0.5g,加入0.1mol/l的磷酸缓冲液6mL,少许石英砂,充分研磨,将匀浆转至离心管中,在12000r/min,3℃下离心20min;去离心液的上清于64℃下热激20min,再在5000r/min,16℃下离心15min,上清液待用。
(2)邻苯三酚自氧化速率的测定:在10mL的试管中加入5mL的Tris-HCl缓冲液,于25℃下保温20min;随后精确加入20μL的(于25℃下已预热好的)邻苯三酚溶液,在起始和3min后记下OD325nm的值,差值为A0;
(3)酶活力的测定:在10mL的试管中加入5mL的Tris-HCl缓冲工作液以及20μL的待测SOD稀释液,于25℃下保温20min;随后精确加入20μL的(于25℃下已预热好的)邻苯三酚溶液,在起始和3min后记下OD325nm的值,差值为As。
抑制率=(A0-As)/A0×100%
SOD活力(U/mL)=((A0-As)/(A0×0.5))×n/V
式中:V为加样体积; n为样品稀释倍数;0.5即一直自氧化反应的50%
A0为初始速率,As为3min后的速率
4. 参考文献
[1]赵福庚,何龙飞,罗庆云.植物逆境生理生态学[m].北京:化学工业出版社,2004,4
[2]张志良,徐伟菁.植物生理学实验指导[m].高等教育出版社,2010.
[3]郭洪雪,宋希云,燕增文等.高温胁迫对小麦幼苗几个生理生化指标的影响[j].华北农学报,2007,22:71-74.
5. 计划与进度安排
1.2022-12-19 确定选题;
2.2022-12-26 — 2022-02-24 接受任务,完成开题准备;
3.2022-02-27 — 2022-03-10 上交开题报告;
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